穩(wěn)定表達軟骨調節(jié)素I的大鼠MSCs細胞株的建立.pdf

1、目的：構建pcDNA3.1(+)/ChM-Ⅰ表達載體，穩(wěn)定轉染大鼠骨髓間充質干細胞，并驗證其在MSCs中的上調表達，建立ChM-Ⅰ穩(wěn)定上調表達的MSCs細胞株，為進一步開展ChM-Ⅰ誘導骨髓間充質干細胞向軟骨細胞方向分化，構建組織工程軟骨相關研究打下基礎。
　　 方法：
　　 1．用Trizol法提取大鼠軟骨組織總RNA，根據ChM-Ⅰ基因序列(序列號：AF051425)設計特異引物，上游引物為：5'GCAGACAAGC

2、TTATGACAGAGAACTCGGACA3’，下游引物為：5' GCAGACGCGGCCGCTTACACCATGCCCAAGATG3’，通過PCR獲取ChM-Ⅰ目的基因，分別將ChM-Ⅰ目的基因的PCR產物和pcDNA3.1(+)質粒雙酶切，并將兩者定向連接，構建pcDNA3.1(+)/ChM-Ⅰ質粒，轉化感受態(tài)細菌，挑取陽性單克隆并擴增，酶切鑒定陽性克隆，并對插入的ChM-Ⅰ片段進行測序。
　　 2．密度梯度離心法獲得大鼠M

3、SCs，傳代培養(yǎng)并擴增。使用流式細胞技術檢測細胞表面抗原；對大鼠MSCs進行成脂及成骨誘導培養(yǎng)，檢測所獲得MSCs的潛在分化能力。
　　 3．脂質體法將質粒轉染進大鼠MSCs。實驗分三組：實驗組(轉染pcDNA3.1(+)/ChM-Ⅰ質粒)；對照組(轉染pcDNA3.1(+)質粒)；空白組。通過預實驗，確定大鼠MSCs的最佳G418篩選濃度為200ug/ml。轉染復合體作用6小時后，更換完全培養(yǎng)基，48小時后加入200ug/ml

4、G418篩選培養(yǎng)基，使用篩選培養(yǎng)基持續(xù)傳代培養(yǎng)并擴增實驗組和對照組細胞，以獲得穩(wěn)定轉染質粒的大鼠MSCs。
　　 4．取穩(wěn)轉后連續(xù)培養(yǎng)三代的大鼠MSCs提取總RNA和蛋白質，使用RT-PCR和Western blot分別在RNA和蛋白質水平上檢測ChM-Ⅰ在各組大鼠MSCs細胞株內的轉錄和表達，鑒定所篩選的大鼠MSCs細胞株中ChM-Ⅰ的上調表達及其穩(wěn)定性。
　　 結果：
　　 1．對陽性克隆鑒定及測序和序列分析

5、對比，結果顯示與ChM-Ⅰ基因長度相符，序列無誤，且讀碼框正確。
　　 2．單細胞懸液接種48小時后換液，倒置顯微鏡觀察并拍照，可于培養(yǎng)皿底部見到呈梭形或三角形的貼壁細胞，培養(yǎng)11-13天后培養(yǎng)皿底部細胞密度達到90％以上。細胞傳代，在6小時內可達80%以上貼壁，細胞生長速度加快，可見細胞呈成纖維細胞樣生長，折光性較強，可呈魚群樣生長。流式細胞儀鑒定結果：MSCs陽性表面抗原CD90、CD29的表達率分別為99.79%、98.4

6、1%； MSCs陰性表面抗原CD45、CD11b/c的表達率分別為2.77%、2.51%。成脂誘導2周后，油紅0染色，脂滴為橙紅色；成骨誘導3周后，茜素紅染色，鏡下顯現為紅色斑片。
　　 3．轉染復合體作用6小時后，可見大量MSCs胞質內出現折光性強的小泡，提示陽離子脂質體已結合質粒進入MSCs。48小時后加入200ug/mlG418篩選培養(yǎng)基5天后空白組出現少量細胞漂浮死亡，實驗組和對照組也可見少量細胞死亡。7天后空白組出現大

7、量死亡，14天后空白組細胞全部死亡，兩個轉染組大約有10%的細胞存活，轉染組細胞不再死亡，開始增殖，生長速度逐漸加快。傳代后，細胞生長旺盛，排列密集整齊，呈編織狀旋渦狀。
　　 4．RT-PCR結果：采用ChM-Ⅰ/GAPDH灰度比值作為評定指標，實驗組、對照組和空白組ChM-Ⅰ/GAPDH灰度比值的平均值分別為1.0817±0.2233、0.3601±0.1260、0.3687±0.0086；實驗組與對照組和空白組間具有統(tǒng)計學

8、意義P＜0.05，對照組與空白組間無統(tǒng)計學意義P＞0.05。Western blot結果：采用ChM-Ⅰ/GAPDH灰度比值作為評定指標，實驗組、對照組和空白組ChM-Ⅰ/GAPDH灰度比值的平均值分別為0.9867±0.0204、0.4155±0.0206、0.3751±0.0081；實驗組與對照組和空白組間具有統(tǒng)計學意義(P＜0.05)，對照組與空白組間無統(tǒng)計學意義(P＞0.05)。結果提示：實驗組中的ChM-Ⅰ在mRNA水平和蛋白