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文檔簡(jiǎn)介
1、<p><b> 本科畢業(yè)設(shè)計(jì)</b></p><p><b> ?。?0_ _屆)</b></p><p> 海蜇酶溶性膠原蛋白的提取工藝研究</p><p> 所在學(xué)院 </p><p> 專(zhuān)業(yè)班級(jí) 食品質(zhì)量與
2、安全 </p><p> 學(xué)生姓名 學(xué)號(hào) </p><p> 指導(dǎo)教師 職稱(chēng) </p><p> 完成日期 年 月 </p><p><b> 目 錄</b><
3、;/p><p><b> 1 引言1</b></p><p> 1.1 膠原蛋白概述1</p><p> 1.1.1 膠原蛋白的結(jié)構(gòu)1</p><p> 1.1.2 膠原蛋白的提取方法的研究進(jìn)展1</p><p> 1.1.3 膠原蛋白的應(yīng)用2</p>&l
4、t;p> 1.2 海蜇膠原蛋白的概述2</p><p> 1.2.1 海蜇的生物學(xué)特性2</p><p> 1.2.2 海蜇膠原蛋白的研究進(jìn)展3</p><p> 1.3 研究的目的和意義3</p><p> 2 材料與方法3</p><p> 2.1 材料與試劑3</p
5、><p> 2.2 儀器與設(shè)備4</p><p><b> 2.3 方法4</b></p><p> 2.3.1 工藝流程4</p><p> 2.3.2 樣品的前處理4</p><p> 2.3.3 酶溶性膠原蛋白的提取4</p><p> 2
6、.3.4 膠原蛋白提取率的測(cè)定4</p><p> 2.3.5 單因素的確定5</p><p> 2.3.6 提取工藝參數(shù)優(yōu)化5</p><p> 2.3.7 膠原蛋白的理化分析5</p><p> 3 結(jié)果與分析6</p><p> 3.1 羥脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制6</p>
7、;<p> 3.2 提取時(shí)間對(duì)酶溶性膠原蛋白提取率的影響6</p><p> 3.3 液料比對(duì)膠原蛋白提取率的影響6</p><p> 3.4 胃蛋白酶濃度對(duì)膠原蛋白提取率的影響7</p><p> 3.5 響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果7</p><p> 3.6 氨基酸組成10</p>
8、<p> 3.7 紫外光譜分析11</p><p> 3.8 紅外光譜分析12</p><p><b> 4 小結(jié)13</b></p><p> 致 謝錯(cuò)誤!未定義書(shū)簽。</p><p><b> 參考文獻(xiàn)14</b></p><p>
9、摘要:我國(guó)海蜇資源豐富,分布廣泛,并具有很高的營(yíng)養(yǎng)及經(jīng)濟(jì)價(jià)值,本文以東海海域新鮮海蜇為原料,通過(guò)響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)對(duì)海蜇膠原蛋白酶法提取進(jìn)行優(yōu)化,并研究了PSC的部分理化性質(zhì)。以膠原蛋白得率為指標(biāo),酶法提取的最佳工藝為:4 ℃條件下提取時(shí)間為41h,液料比19:1,酶濃度為4%,在此條件下海蜇膠原蛋白的預(yù)測(cè)提取率為0.411%,與預(yù)測(cè)值的誤差為4.42%,由此可見(jiàn),響應(yīng)面法優(yōu)化的最佳提取工藝可靠。在膠原蛋白特性研究結(jié)果中顯示:該膠原蛋白氨基酸含
10、量豐富,其中Gly含量最高,約占總氨基酸的22%;紫外光譜掃描顯示酶促溶性膠原蛋白(PSC)的最大吸收峰在208 nm;紅外光譜掃描顯示膠原蛋白基本保留了三股螺旋結(jié)構(gòu)。</p><p> 關(guān)鍵詞:海蜇;酶溶性膠原蛋白;提取工藝</p><p> Abstract: Jellyfish is one of the most important fishery resources in C
11、hina, which has high nutritional and economic value. In this paper, the extracting conditions of pepsin-soluble collagen (PSC) from jellyfish were optimized based on response surface method. The result shows that the opt
12、imal condition of PSC extraction was obtained as following: extraction time 41h, the solid/water ratio of 19:1, enzyme concentration of 4% at 4℃, under these condition the prediction extraction rate of jellyfi</p>
13、<p> Keywords: Jellyfish; Pepsin-soluble collagen; Extraction</p><p><b> 1 引言</b></p><p> 1.1 膠原蛋白概述</p><p> 膠原蛋白是動(dòng)物體內(nèi)含量最豐富,分布最廣泛的蛋白質(zhì),占人體內(nèi)總蛋白質(zhì)的25%~30%[1],存在于
14、動(dòng)物的骨、皮、腱、韌帶和軟骨中,是結(jié)締組織中極其重要的一種結(jié)構(gòu)蛋白[2]。膠原蛋白的作用是支撐器官和保護(hù)肌體,同時(shí)也是組成細(xì)胞間質(zhì)的最重要的功能蛋白質(zhì)。</p><p> 1.1.1 膠原蛋白的結(jié)構(gòu)</p><p> 膠原蛋白種類(lèi)繁多,結(jié)構(gòu)復(fù)雜。但是膠原蛋白的基本組成卻是大同小異:三條左手螺旋的α肽鏈在氨基酸殘基的作用下以右手螺旋方式形成的蛋白質(zhì)[3]。在膠原蛋白的肽鏈甘氨酸占總氨基
15、酸的1/3,與另外兩個(gè)氨基酸形成三肽Gly-X-Y(X,Y經(jīng)常是脯氨酸或者羥脯氨酸)的重復(fù)區(qū)域,各肽鏈以肽鏈之間Gly殘基形成的氫鍵連接到一起。其中Gly殘基位于螺旋的中心軸線上,其他氨基酸則占據(jù)三股螺旋的外圍位置。另外,膠原蛋白也可通過(guò)羥脯氨酸殘基分子內(nèi)氫鍵來(lái)穩(wěn)定自身。另外膠原蛋白還具有非三螺旋結(jié)構(gòu)域。絕大部分蛋白質(zhì)幾乎不含羥脯氨酸,所以將羥脯氨酸可以作為膠原蛋白的特征氨基酸[4]。</p><p> 1.1
16、.2 膠原蛋白的提取方法的研究進(jìn)展</p><p> 膠原蛋白的提取方法主要有:酸法浸提、熱水浸提、堿法浸提與酶法浸提,其基本的原理都是根據(jù)膠原蛋白本身的特性,改變蛋白質(zhì)所處的外界環(huán)境,將膠原蛋白從其他蛋白質(zhì)中分離出來(lái)。因?yàn)楦鞣N方法本身缺點(diǎn)的限制[5],實(shí)際提取過(guò)程中經(jīng)常將不同方法相互結(jié)合。另外高壓技術(shù)在膠原蛋白提取中的應(yīng)用也引起了越來(lái)越多研究者的興趣。</p><p> 1.1.2
17、.1 酶法浸提</p><p> 酶法提取時(shí)得到的是酶溶性膠原蛋白( Pepsin soluble collagen, 簡(jiǎn)稱(chēng)PSC),是采用對(duì)膠原作用較弱的酶處理樣品,這種酶只作用于膠原蛋白的非螺旋端肽,而不會(huì)改變膠原蛋白的三螺旋結(jié)構(gòu)。目前應(yīng)用于實(shí)際生產(chǎn)中的酶主要有胃蛋白酶、堿性蛋白酶、中性蛋白酶、胰蛋白酶、木瓜蛋白酶等[6-8]。酶解膠原蛋白的工藝可以分為單酶水解法和多酶水解法[9]。影響酶法浸提的因素有溫
18、度、時(shí)間、酶量、pH、料液比等。</p><p> 胡建平[10]采用胃蛋白酶、木瓜蛋白酶和胰蛋白酶三種不同蛋白酶提取鰱魚(yú)磷膠原蛋白,選取效果最好的酶用正交試驗(yàn)優(yōu)化膠原蛋白制備工藝。結(jié)果表明,胃蛋白酶提取鰱魚(yú)磷膠原蛋白效果最好,其最佳提取工藝條件為:40℃、48h、酶量4%和pH2,提取率為56.8%。陳小娥等[11]以安康魚(yú)皮為原料,采用酶法提取膠原蛋白,用正交實(shí)驗(yàn)堆安康魚(yú)皮膠原蛋白提取工藝進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明
19、,當(dāng)胃蛋白酶質(zhì)量分?jǐn)?shù)l%,料液比1:10,酶解時(shí)間6h,酶解溫度5℃,平均提取率為11.01%,純度為96.5%。</p><p> 1.1.2.2 酸法浸提</p><p> 酸法浸提,所用酸大多數(shù)是醋酸,有的還用檸檬酸、磷酸等[12],其中檸檬酸因不產(chǎn)生顏色和異味得以在視屏工業(yè)的膠原蛋白提取中廣泛的應(yīng)用。酸法提取膠原蛋白的工藝流程為:水產(chǎn)品→預(yù)處理→酸萃取→離心(上清液)→鹽析(
20、NaCl)→ 透析→ASC濃縮液→冷凍干燥,即可得到酸溶性膠原蛋白(Acid-soluble collagen ,ASC)[13]。張虹、桌素珍等[14]采用0.5 mol/L 醋酸提取,結(jié)合NaCl沉淀法從鮟鱇魚(yú)皮中提取酸溶性膠原蛋白(ASC),凍干魚(yú)皮與0.1 mol/L NaOH以1:10(W/V)的料液比混合,磁力攪拌器攪拌24 h,用蒸餾水洗至樣液呈弱堿性。加入10%丁醇攪拌浸泡,用蒸餾水沖洗除盡丁醇后,加入0.5mol/L醋
21、酸溶液浸泡提取24h,離心,沉淀用醋酸溶液繼續(xù)提取24h,提取物也按上述方法處理。兩次提取、離心得到的上清液混合后用0.9mol/LNaCl鹽析,沉淀物以0.5mol/L醋酸溶液復(fù)溶、鹽析來(lái)達(dá)到提純膠原蛋白的目的。</p><p> 1.1.2.3 堿法浸提</p><p> 堿法提取膠原蛋白,常采用石灰、氫氧化鈉等處理劑。一般都是把樣品勻漿后,用堿溶液多次溶脹,然后再離心提取。關(guān)于
22、堿法提取膠原蛋白的報(bào)道相對(duì)較少,大多都是和其他提取方法結(jié)合使用。</p><p> 1.1.2.4 熱水浸提</p><p> 熱水提取法是先將原料經(jīng)除雜蛋白等前處理,然后在熱水中直接提取已經(jīng)變性的膠原蛋白或者膠原蛋白水解物[15]。李聞欣,楊明來(lái)等[16]研究了淡水魚(yú)鱗水法制膠原蛋白。結(jié)果表明:制膠條件為溫度60~70℃、時(shí)間2~3h。并通過(guò)研究發(fā)現(xiàn):溫度高些有助于提膠,但溫度過(guò)高
23、抽提率還有所下降。</p><p> 1.1.2.5 結(jié)合法提取</p><p> 由于季節(jié)的不同,不同水產(chǎn)品中含有羥脯氨酸與脯氨酸的量不同。而這兩種氨基酸的含量直接影響膠原蛋白的穩(wěn)定性,含量越高,膠原蛋白就越穩(wěn)定,則越難提取出來(lái)。所以可以考慮酸酶聯(lián)用來(lái)提取膠原蛋白。曾嶸等新鮮草魚(yú)魚(yú)鱗、魚(yú)鰭為原料將酸、堿法提取與酸、酶結(jié)合提取作了比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn):用傳統(tǒng)的酸、堿提取法產(chǎn)率較低,然而酸酶
24、結(jié)合提取法除了有較高的產(chǎn)率,且反應(yīng)條件溫和,蛋白結(jié)構(gòu)不易被破壞。此外還有酸堿結(jié)合法,酸堿與熱水結(jié)合法等。結(jié)合法是現(xiàn)在很多研究者正在研究的工作,希望通過(guò)該法克服單一方法的不足,從而得到高提取率的膠原蛋白[17、18]。</p><p> 1.1.2.6 其他方法在膠原蛋白提取中的應(yīng)用</p><p> 另一些技術(shù)也逐漸應(yīng)用到膠原蛋白的提取當(dāng)中,例如高壓、微波[19]。莊永亮、李八方等[
25、20]研究了高壓輔助熱水提取海蜇膠原蛋白的工藝條件。以膠原蛋白得率(用羥脯氨酸含量計(jì)算)為指標(biāo),分別研究了高壓功率、高壓處理的時(shí)間、熱水溫度以及熱水提取時(shí)間對(duì)膠原蛋白得率的影響,得到優(yōu)化的工藝條件:料液比l:4(W/V),高壓功率250MPa,高壓處理時(shí)間10 min,熱水處理溫度70℃,熱水提取時(shí)間1.5 h。此條件下,海蜇膠原蛋白的得率為68.2%。與傳統(tǒng)的膠原蛋白提取方法比較,高壓輔助提取方法操作工藝簡(jiǎn)單易控制,產(chǎn)品無(wú)小分子鹽摻入
26、,生產(chǎn)周期短,生產(chǎn)環(huán)保無(wú)污染。</p><p> 1.1.3 膠原蛋白的應(yīng)用</p><p> 膠原蛋白具有較強(qiáng)的生物活性和生物功能,能參與細(xì)胞的遷移、增殖和分化,使骨、腱、軟骨和皮膚具有一定程度的機(jī)械強(qiáng)度。同時(shí)膠原蛋白還能促進(jìn)細(xì)胞的生長(zhǎng),具有止血,生物相容性和生物降解性。因其具有這些性質(zhì),膠原蛋白在創(chuàng)傷、燒傷、眼角膜疾病、美容、矯形、硬組織修復(fù)、創(chuàng)面止血等醫(yī)藥衛(wèi)生領(lǐng)域有著廣泛的應(yīng)用
27、。</p><p> 由于膠原蛋白及其水解物與人皮膚膠原的結(jié)構(gòu)相似,相容性較好,可以擴(kuò)散到皮膚深層,對(duì)人的皮膚有很好的營(yíng)養(yǎng)作用,且膠原蛋白分子外側(cè)存在大量的羧基和羥基,同時(shí)存在大量的甘氨酸等天然保濕因子,能夠提高組織細(xì)胞的貯水能力,使皮膚保濕;膠原蛋白溶液還有很強(qiáng)的抗輻射作用,因而膠原蛋白還廣泛應(yīng)用于化妝品行業(yè)[21-23]。膠原蛋白也可以作為功能食品和保健食品,也可以生產(chǎn)可食性包裝材料[24]。</p&
28、gt;<p> 1.2 海蜇膠原蛋白的概述</p><p> 近年來(lái),由于瘋牛病等疾病的暴發(fā)以及宗教因素的影響[25],人們開(kāi)始尋求從水產(chǎn)動(dòng)物中提取膠原蛋白。我國(guó)海蜇資源豐富,因此,如能從海蜇廢棄物中提取膠原蛋白加以利用,既能促進(jìn)海蜇加工廢棄物的綜合利用,又能開(kāi)發(fā)一種新的膠原蛋白源。</p><p> 1.2.1 海蜇的生物學(xué)特性</p><p&
29、gt; 海蜇(Rhopilem esculentum),又稱(chēng)為刺胞動(dòng)物,屬腔腸動(dòng)物門(mén)、缽水母綱、根口水母目、海蜇屬[26],是暖水沿岸物種,在海洋內(nèi)分布廣泛。海蜇在海洋中營(yíng)浮游生活,棲息于近岸水域,喜居河口附近,主要分布于中國(guó)、日本、朝鮮半島沿岸及俄羅斯遠(yuǎn)東海域。海蜇體呈傘蓋狀,通體半透明,白色、青色或微黃色,傘徑超過(guò)45cm,最大可達(dá)1m,呈半球形,上傘隆起,中膠層發(fā)達(dá);下傘較薄,邊緣具發(fā)達(dá)環(huán)肌,能收縮運(yùn)動(dòng)[27]。</p&g
30、t;<p> 1.2.2 海蜇膠原蛋白的研究進(jìn)展</p><p> 海蜇除可食用外,全身都可入藥,根據(jù)《本草綱目》所述,海蜇“氣味咸溫?zé)o毒、主治婦人勞損、積血帶下,小兒風(fēng)疾丹毒,燙火傷”,對(duì)哮喘、氣管炎、胃潰瘍、單純性甲狀腺腫大、高血壓等癥均有療效[26、28]。新鮮海蜇含水量約為96%,蛋白質(zhì)含量約2.92%,脂肪含量小于0.01%。除水外,蛋白質(zhì)是海蜇的主要成分,而且主要是膠原蛋白[26]
31、。因此海蜇的藥理功能與其蛋白質(zhì)組成必然有一定的聯(lián)系,已有研究表明,從海蜇中提取的膠原蛋白可用于治療風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎。因此對(duì)海蜇的膠原蛋白及其氨基酸組成進(jìn)行測(cè)定也是很有必要的,這將有助于海蜇的營(yíng)養(yǎng)評(píng)價(jià)和保健功能的研究。</p><p> 莊永亮等[29]研究海蜇傘部胃蛋白酶促溶性膠原蛋白的提取及其部分理化性質(zhì),氨基酸組成及SDS-PAGE顯示,海蜇傘部膠原蛋白(PSC)為Ⅰ型膠原蛋白;含糖量為2.8%;熱變性溫度和熱
32、收縮溫度分別為28.8℃和51.6℃,均低于牛皮Ⅰ型膠原;紅外光譜顯示PSC保留了大量的三股螺旋結(jié)構(gòu);溶解性表明PSC 的等電點(diǎn)為pH6,在pH3 時(shí)有最大溶解度;酸性條件下鹽濃度高于4%(m/V)時(shí),PSC的溶解度急劇下降。安桂香對(duì)新鮮海蜇的頭部和腕部進(jìn)行了氨基酸成分的分析,海蜇的蛋白占其干重的50%,其氨基酸成分種類(lèi)齊全,必須氨基酸含量豐富。分別用酸性蛋白酶、中性蛋白酶、堿性蛋白酶、胃蛋白酶、蛋白酶以及復(fù)合酶對(duì)海蜇的蛋白部分進(jìn)行了酶
33、解,確定出堿性蛋白酶酶解的最適反應(yīng)條件為酶用量。金桂芬等分別采用酸法和酶法從海蜇提取膠原蛋白,結(jié)果表明,酶法提取相對(duì)于酸法提取可獲得較高含量的膠原蛋白。</p><p> 1.3 研究的目的和意義</p><p> 如今海蜇養(yǎng)殖業(yè)得興起和發(fā)展為膠原蛋白的提取豐富了新的原料來(lái)源,且海蜇經(jīng)加工后產(chǎn)生的大量廢棄物是制備高蛋白食物的優(yōu)良原料,開(kāi)發(fā)利用廢棄物也有利于提高海蜇的附加值。從海蜇中提
34、取得到的膠原蛋白因其特殊的氨基酸組成及理化性質(zhì)而具有獨(dú)特的生理功能,包括抗菌、抗過(guò)敏、降血壓、降膽固醇、抗衰老、治療關(guān)節(jié)炎癥和保健等功效[30],可用作藥品、食品、化妝品等相關(guān)制品原料。隨著科技進(jìn)步、經(jīng)濟(jì)發(fā)展和生活質(zhì)量的普遍提高,人們崇尚綠色、回歸自然意識(shí)的增強(qiáng),高附加值海蜇膠原蛋白將越來(lái)越受到人們的廣泛青睞。</p><p> 本文采用胃蛋白酶提取海蜇中的酶溶性膠原蛋白,考察了提取時(shí)間、酶用量、液料比對(duì)酶法提
35、取率的影響,再結(jié)合響應(yīng)面分析得出膠原蛋白提取的工藝優(yōu)化條件。同時(shí)也對(duì)提取的膠原蛋白的理化性質(zhì)進(jìn)行分析:氨基酸分析、紅外光譜分析、紫外光譜分析,為海蜇酶溶性膠原蛋白的應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。</p><p><b> 2 材料與方法</b></p><p> 2.1 材料與試劑</p><p> 海蜇,購(gòu)于浙江省岱山縣水產(chǎn)市場(chǎng);</p&
36、gt;<p> L-羥脯氨酸,購(gòu)于Sigma公司;</p><p> 檸檬酸鈉、氫氧化鈉、檸檬酸、氯胺T、對(duì)二甲基氨基苯甲醛、冰乙酸、乙二醇獨(dú)甲醚、濃硫酸、高氯酸、鹽酸、無(wú)水乙醇、溴化鉀、醋酸、溴酚藍(lán)、乙醚、戊巴比妥鈉,均為AR級(jí),購(gòu)于寧波奧博科學(xué)儀器有限公司;</p><p> 胃蛋白酶,由國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司提供;</p><p> 十
37、二烷基硫酸鈉、過(guò)硫酸胺、丙烯酰胺、β-巰基乙醇、考馬斯亮藍(lán)R-25,購(gòu)自上海生物工程有限公司;</p><p> 相關(guān)實(shí)驗(yàn)試劑的配置:</p><p> 檸檬酸緩沖液:檸檬酸鈉120g、冰醋酸12mL、檸檬酸46g、氫氧化鈉34g溶解于蒸餾水中,調(diào)整pH值至6.0,然后定容至1000mL;</p><p> 0.05mol/L氯胺T溶液:稱(chēng)取氯胺T 7.05g
38、,溶解于100mL蒸餾水中,然后加入乙二醇獨(dú)甲醚150 mL,再加入250mL檸檬酸緩沖液混合均勻;</p><p> 對(duì)二甲基氨基苯甲醛:試劑A:取無(wú)水乙醇20mL,慢慢加入濃硫酸2.74mL;試劑B:取對(duì)二甲基氨基苯甲醛12.0g,慢慢加入無(wú)水乙醇40mL,水浴加熱使其完全溶解并冷卻至室溫,然后將A液慢慢加入B,混合均勻;</p><p> 3.5 mol/L高氯酸溶液:取27mL
39、高氯酸,以蒸餾水定容到100mL。</p><p> 2.2 儀器與設(shè)備</p><p> 臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(Heraeus,德國(guó)科峻儀器公司)</p><p> 真空冷凍干燥機(jī)(Freezing Dry,美國(guó)LABCONCO公司)</p><p> 可見(jiàn)分光光度計(jì)(T6新悅,北京普析通用儀器有限責(zé)任公司)</p>
40、<p> 傅里葉紅外光譜儀(TENSOR 27型,德國(guó)Bruker公司)</p><p> 紫外分光光度計(jì)(Cary50,美國(guó)Varian公司)</p><p> 液相色譜儀(Agilent1200,美國(guó)安捷倫科技公司)</p><p> 微波消解系統(tǒng)(MARS,美國(guó)CEM公司)</p><p><b> 2.3
41、 方法</b></p><p> 2.3.1 工藝流程</p><p> 采樣→前處理→酸溶性膠原蛋白提取后的沉淀→酸萃?。用福x心→上清液→鹽析→透析→PSC濃縮液→冷凍干燥</p><p> 2.3.2 樣品的前處理</p><p> 將海蜇頭和海蜇皮分離,用蒸餾水浸泡洗滌海蜇皮以去除鹽分并瀝干,切成小塊,用
42、20倍體積0.5%的氫氧化鈉溶液浸泡2h左右,再用蒸餾水沖洗至中性,瀝干留以備用。</p><p> 2.3.3 酶溶性膠原蛋白的提取</p><p> 膠原存在的原始狀態(tài)為:中間是規(guī)則的三股螺旋區(qū)域,兩端是非螺旋區(qū),非螺旋區(qū)是導(dǎo)致膠原蛋白不溶的根源,因此需要采用合適的方法去除非螺旋區(qū)。本實(shí)驗(yàn)選擇胃蛋白酶作為催化劑,在酸性條件下作用與膠原端肽非螺旋區(qū),有選擇性的切斷苯丙氨酸、亮氨酸或
43、谷氨酸羧基側(cè)的肽鍵,將非螺旋區(qū)去除,則含三螺旋結(jié)構(gòu)的主體部分可溶解有機(jī)酸而以近完整分子的形式釋放出來(lái),從而提高膠原蛋白溶解量。</p><p> 實(shí)驗(yàn)步驟如下:取一定量搗碎均勻的海蜇,先用醋酸提取酸溶性膠原蛋白。提取后的沉淀,加入適量0.5mol/L醋酸,加入胃蛋白酶,浸提一定時(shí)間后,在10000r/min離心30min,離心后得到的上清液即為酶促溶性膠原蛋白粗制液,再加入NaCl使?jié)舛葹?.9mol/L,攪拌
44、后再次在10000r/min離心30min,并將離心得到的沉淀溶于少量的0.5mol/L醋酸,再轉(zhuǎn)入透析袋對(duì)去離子水透析2d,冷凍干燥即得酶促溶性膠原蛋白(PSC)制品。以上操作都在低溫(4℃)下進(jìn)行。</p><p> 2.3.4 膠原蛋白提取率的測(cè)定</p><p> 膠原蛋白含有大量的甘氨酸,脯氨酸,羥脯氨酸,羥賴氨酸,其中羥脯氨酸(Hyp)和羥賴氨酸在其它蛋白中很少見(jiàn),為膠原
45、蛋白所特有。通過(guò)測(cè)定羥脯氨酸的含量,然后乘以相應(yīng)的系數(shù)可以得到膠原蛋白的含量。</p><p> 膠原蛋白得率(%)=11.1×A×稀釋倍數(shù)/M×100</p><p> M:海蜇質(zhì)量(mg)</p><p> A:羥脯氨酸含量(mg)</p><p> 羥脯氨酸通過(guò)分光光度計(jì)來(lái)測(cè)量。首先配置羥脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)
46、工作液,準(zhǔn)確稱(chēng)取L-羥基脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)品11mg,加入0.01mol/L鹽酸中溶解,稀釋并定容到100mL,濃度為110μg/ mL,在冰箱中保存。</p><p> 吸取羥脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)工作液1.0、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5mL,分別用蒸餾水定容到100mL。以蒸餾水為空白,分別吸取上述標(biāo)準(zhǔn)液1mL,加入1mL檸檬酸緩沖液和1mL 0.05mol/L氯胺T溶液,25℃氧化10min后,加入高氯酸
47、1mL(3.5mol/L),放置10min,加入對(duì)二甲基氨基苯甲醛試劑1mL,在65℃水浴顯色10min,冷卻后在560nm處測(cè)吸光度。以羥脯氨酸質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。測(cè)定樣品在560nm處得吸光度,查標(biāo)準(zhǔn)曲線得樣品的羥脯酸含量。</p><p> 2.3.5 單因素的確定</p><p> 2.3.5.1 提取時(shí)間的選擇</p><p&
48、gt; 在酶濃度2%,液料比為20,4℃條件下提取膠原蛋白,提取結(jié)束后,離心,濃縮干燥。研究提取時(shí)間分別為12h、34h、36h、48h和60h對(duì)海蜇膠原蛋白得率的影響。</p><p> 2.3.5.2 液料比的確定</p><p> 在酶濃度2%,提取時(shí)間為36h,4℃下液料比分別為5、10、15、20、25和30時(shí),測(cè)定膠原蛋白的提取率。</p><p&g
49、t; 2.3.5.3 酶濃度的選擇</p><p> 提取時(shí)間36h,液料比為15,酶濃度分別為0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%和4%,確定酶濃度與膠原蛋白提取率的關(guān)系。</p><p> 2.3.6 提取工藝參數(shù)優(yōu)化</p><p> 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,確定Box-Behnken設(shè)計(jì)的自變量,以膠原蛋白的提取得率為響應(yīng)值,通
50、過(guò)響應(yīng)曲面分析進(jìn)行提取條件的優(yōu)化。</p><p> 2.3.7 膠原蛋白的理化分析</p><p> 2.3.7.1 氨基酸分析</p><p> 氨基酸分析采用高效液相色譜法。各氨基酸組分由于極性,等電點(diǎn)或分子大小的不同,先后分別被洗脫。稱(chēng)取一定量膠原蛋白樣品于四氟乙烯消解罐中,加入6 mol/LHCL,進(jìn)行消解,消解程序見(jiàn)表1。消解結(jié)束后調(diào)節(jié)pH值至
51、7.2,定容至25mL,取1mL過(guò)0.22μm微孔濾膜,備用。</p><p> 儀器工作條件是Hypersil AA-ODS 2.1×200mm×5μm氨基酸柱,進(jìn)樣量為2 μL,流速為0.45 mL/min,柱溫為40℃,后運(yùn)行時(shí)間為2min,VWD檢測(cè)器波長(zhǎng)為338nm。流動(dòng)相A為20mmol/L醋酸鈉溶液,pH=7.20±0.05;流動(dòng)相B為醋酸鈉,乙腈,甲醇混合液,體積比
52、為100mmol/L醋酸鈉溶液:乙腈:甲醇=20:40:40,pH=7.20±0.05;衍生化試劑分別為OPA(鄰苯二甲醛)和FMOC(9-氯甲酸芴甲酯)。</p><p><b> 表1 樣品消解程序</b></p><p> Tab.1 Sample hydrolysis process</p><p> 2.3.7.2
53、 紫外光譜分析</p><p> 用蒸餾水將制備的海蜇膠原蛋白溶解,在200nm-400nm的近紫外光區(qū)進(jìn)行全波長(zhǎng)掃描。</p><p> 2.3.7.3 紅外光譜分析</p><p> 利用膠原蛋白肽鍵中的分子結(jié)構(gòu)與紅外光譜吸收帶的波長(zhǎng)位置與吸收譜帶的吸收強(qiáng)度相對(duì)應(yīng)的特點(diǎn)[31],采用傅立葉變換紅外光譜對(duì)膠原蛋白進(jìn)行透射掃描。在紅外燈照射下將少量樣品和適量
54、的干燥的KBr,混合均勻并研成分粉末狀。取少許樣品壓片,全反射光譜測(cè)定法(ATR)進(jìn)行測(cè)定。傅里葉紅外光譜儀在4000~400cm-1范圍內(nèi)掃描,分辨率設(shè)置為4cm-1。</p><p><b> 3 結(jié)果與分析 </b></p><p> 3.1 羥脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制</p><p> 根據(jù)測(cè)定的數(shù)值,以羥脯氨酸質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),
55、吸光值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(見(jiàn)圖1),求出回歸方程y=0.0979+0.0043,R2=0.9988,曲線線性良好。</p><p> 圖1 羥脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線</p><p> Fig.1 The standard curve of Hyp</p><p> 3.2 提取時(shí)間對(duì)酶溶性膠原蛋白提取率的影響</p><p> 在酶濃度2
56、%,液料比為20,4℃條件下分別設(shè)定水解時(shí)間為12h、34h、36h、48h和60h來(lái)研究膠原蛋白的提取率與反應(yīng)時(shí)間的關(guān)系,結(jié)果見(jiàn)圖2,可以看出隨著提取時(shí)間的延長(zhǎng),膠原蛋白的提取率也隨之增加,當(dāng)時(shí)間到36h時(shí),提取率達(dá)到最大,而后提取率有所下降,因此提取時(shí)間確定為36h。隨著時(shí)間的延長(zhǎng),提取的膠原蛋白含量不斷增加,36h到達(dá)最大值,但隨著時(shí)間的繼續(xù)延長(zhǎng),底物不斷減少,胃蛋白酶開(kāi)始作用膠原蛋白,使得膠原蛋白含量開(kāi)始減少。</p>
57、;<p> 圖2 時(shí)間對(duì)膠原蛋白提取的影響</p><p> Fig.2 Effect of extraction time on the jellyfish collagen</p><p> 3.3 液料比對(duì)膠原蛋白提取率的影響</p><p> 在考察液料比的影響時(shí),我們采用液料比分別為5、10、15、20、25和30,測(cè)定膠原蛋白
58、的提取率,結(jié)果見(jiàn)圖3。從中可以看出隨著液料比的增加,提取率也隨之增加,這主要是由于液料比的增加促使組織不斷膨脹,打開(kāi)含有醛胺類(lèi)得交聯(lián)鍵,更有利于酶解的進(jìn)行。當(dāng)達(dá)到15時(shí),提取率又下降,因此確定最佳液料比為15(v:m)。液料比較小時(shí),海蜇不能完全浸于其中,提取率低,液料比變大,膠原蛋白提取率變小,原因可能是液料比大造成膠原蛋白分離純化困難,損失較多。</p><p> 圖3 液料比對(duì)膠原蛋白提取的影響</
59、p><p> Fig.3 Effect of water/solid ratoi on the jellyfish collagen</p><p> 3.4 胃蛋白酶濃度對(duì)膠原蛋白提取率的影響</p><p> 酶濃度是影響膠原蛋白產(chǎn)率的重要因素,如果酶濃度過(guò)低,則底物反應(yīng)不充分;而酶濃度過(guò)高則會(huì)引起分子之間的相互作用,阻止酶解反應(yīng)的順利進(jìn)行。本實(shí)驗(yàn)研究了在
60、提取時(shí)間36h、液料比為15時(shí),酶濃度分別為0.5%、1%、1.5%、2%、2.5%、3%、3.5%和4%對(duì)膠原蛋白產(chǎn)率的影響,結(jié)果如圖4所示。PSC得率隨著酶濃度的增加而提高,當(dāng)酶濃度大于3.5%時(shí),提取率有所降低,因此確定酶濃度為3.5%。</p><p> 圖4 酶濃度對(duì)膠原蛋白提取的影響</p><p> Fig.4 Effect of enyzme concentratio
61、n on the jellyfish collagen</p><p> 3.5 響應(yīng)面優(yōu)化實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果</p><p> 在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,確定最佳提取時(shí)間為36h,液料比為15,酶濃度為3.5%,設(shè)計(jì)三因素三水平的實(shí)驗(yàn)見(jiàn)表2。響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見(jiàn)表3,15個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)分為析因點(diǎn)和零點(diǎn),其中析因點(diǎn)為自變量取值在A、B、C所構(gòu)成的三維頂點(diǎn);零點(diǎn)為區(qū)域的中心點(diǎn),零點(diǎn)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次(13
62、、14、15),用以估計(jì)試驗(yàn)誤差。</p><p> 表2 響應(yīng)面分析因素及水平</p><p> Tab. 2 Factors and levels of response surface experiment</p><p> 表3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果</p><p> Tab.3 Design and results o
63、f response surface experiment</p><p> 根據(jù)表3的結(jié)果,通過(guò)響應(yīng)面回歸程序進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,得出回歸模型,回歸方程為:</p><p> Y=0.402333+0.007125A+0.0125B+0.019625C+0.00825AB+0.003AC +0.01825BC-0.01942A2-0.01967B2-0.00442C2</p>
64、<p> 模擬的可靠性可通過(guò)方差分析及相關(guān)系數(shù)來(lái)考察,見(jiàn)表4。</p><p> 根據(jù)回歸分析結(jié)果(表4)做出響應(yīng)面圖(a)和等高圖(b)見(jiàn)圖4、圖5及圖6。</p><p> (a) (b)</p><p> 圖4 提取時(shí)間和液料比對(duì)膠原得率的響應(yīng)面圖</p>
65、<p> Fig.4 Response surface plots of extract time and water/solid ratio</p><p> (a) (b)</p><p> 圖5 提取時(shí)間和加酶量對(duì)膠原得率的響應(yīng)面圖</p><p> Fig.5 Respo
66、nse surface plots of extract time and enzyme concentration</p><p> (a) (b)</p><p> 圖6 液料比和加酶量對(duì)膠原得率的響應(yīng)面圖</p><p> Fig.6 Response surface plots o
67、f water/solid ratio and enzyme concentration</p><p> 從圖4可以看出,當(dāng)提取時(shí)間一定時(shí),提取率隨著液料比的增加而變大,達(dá)到一定程度時(shí)提取率又降低,這說(shuō)明液料比或大或小都會(huì)影響膠原蛋白的提取率,當(dāng)液料比大時(shí),對(duì)膠原蛋白的提取和純化都帶來(lái)一定的困難,液料比小時(shí),膠原蛋白又不能完全浸于其中。當(dāng)液料比一定時(shí),提取率也隨時(shí)間的延長(zhǎng)增大隨后又降低。從圖5中可以看出,提取
68、時(shí)間一定,提取率隨加酶量的增加而變大,其后變化較緩慢。從圖6中看出,加酶量一定,提取率隨液料比的增加而先變大后變小。液料比一定時(shí),提取率隨加酶量的增加而增加。</p><p> 當(dāng)“Prob>F”值小于0.05級(jí)表示指標(biāo)顯著。從表4的分析結(jié)果可看出,整體模型的“Prob>F”值小于0.05,表明該回歸方差模型是顯著的,并且失擬項(xiàng)不顯著,說(shuō)明該模型的擬合度較好;從回歸方程各項(xiàng)方差的進(jìn)一步檢驗(yàn)可看出,液料比和酶濃度
69、的一次項(xiàng)的影響是顯著的,提取時(shí)間和液料比的二次項(xiàng)的影響也是顯著的,交互項(xiàng)作用影響不顯著,說(shuō)明各因素對(duì)海蜇膠原蛋白提取率的影響不是簡(jiǎn)單的線性關(guān)系,表明回歸方程能夠很好地模擬真實(shí)的曲面。因此,回歸方程可以較好地描述各因素與響應(yīng)值之間的真實(shí)關(guān)系,可以利用該回歸方程確定最佳提取工藝條件:4℃條件下提取時(shí)間為41.4h,液料比為19.4:1,酶濃度為4%,在此條件下海蜇膠原蛋白的預(yù)測(cè)提取率為0.43%。為了驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)的可靠性,將酶促溶性膠原蛋白最優(yōu)
70、提取條件修正為提取時(shí)間41h,底物濃度為19:1,酶濃度為4%,在此條件下測(cè)定的膠原蛋白的提取率為0.411%,與預(yù)測(cè)值的誤差為4.42%。以此可以看出,響應(yīng)面優(yōu)化的最佳提取工藝較為可靠。</p><p> 表4 酶法提取方差分析表</p><p> Tab.4 The table of variance analysis in pepsin-extraction</p>
71、<p> 3.6 氨基酸組成</p><p> 膠原蛋白的氨基酸組成見(jiàn)表5。從中可以看出通過(guò)酶法提取的海蜇膠原蛋白的氨基酸含有7種為人體必需的氨基酸(色氨酸水解過(guò)程中被破壞,未被檢測(cè)到)。甘氨酸、天冬氨酸、谷氨酸的含量較高,其中甘氨酸占總量的22%;而酪氨酸、賴氨酸等含量較少。</p><p> 表5 膠原蛋白的氨基酸含量(mg/g)</p><p&
72、gt; Tab.5 Contents of amino acids in Collagen (mg/g)</p><p> 注,*:必需氨基酸;TEAA:總必須氨基酸量;TAA:總氨基酸量;-:未檢出</p><p> Note, *: essential amino acid; TEAA: total essential amino acids; TAA: total amino
73、 acids; -: Undetected</p><p> 3.7 紫外光譜分析</p><p> 一般具有共軛雙鍵的物質(zhì)都具有紫外吸收,在20種基本氨基酸中,Trp、Tyr、Phe和His4種是具有共軛雙鍵的,而這其中Trp的紫外吸收最厲害,在280nm的紫外吸收較強(qiáng),所以大多數(shù)蛋白質(zhì)在280nm都有一個(gè)很強(qiáng)的紫外吸收,并可通過(guò)對(duì)280nm的紫外吸收度的測(cè)量對(duì)蛋白質(zhì)溶液進(jìn)行定量分
74、析,但膠原蛋白由于幾乎不含Trp,所以在280nm沒(méi)有強(qiáng)吸收峰的出現(xiàn),這可以作為一個(gè)鑒定膠原蛋白的方法。從圖7可知,膠原蛋白在208nm處有一個(gè)吸收峰,而在280nm處沒(méi)有顯著吸收,這表明所提取的酶溶性膠原蛋白純度很高。</p><p> 圖7 PSC紫外吸收光譜</p><p> Fig.7 UV absorption spectra of PSC</p><
75、p> 3.8 紅外光譜分析</p><p> 使用傅立葉變換紅外光譜儀測(cè)得海蜇PSC的紅外圖譜如圖8所示。</p><p> 圖8 PSC紅外光譜圖</p><p> Fig.8 Fourier transform infrared spectrum of PSC</p><p> 對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行分析,可以獲知傅立葉變換紅
76、外光譜圖中蛋白質(zhì)的吸收峰位置、振動(dòng)方式以及譜帶歸屬(見(jiàn)表6)。</p><p> 表6 PSC紅外光譜歸屬</p><p> Tab.6 FTIR band assignments of PSC</p><p> 譜圖中相應(yīng)的特征波數(shù)符合膠原的吸收峰位,證明所制得的為膠原蛋白。據(jù)表6可知,N-H伸縮振動(dòng)的吸收峰出現(xiàn)在3400~3440cm-1處,樣品PS
77、C的酰胺A出現(xiàn)在3423.14cm-1。2933.31cm-1的弱吸收為酰胺B的C-H伸縮引起的特征吸收峰。酰胺Ⅰ帶的特征吸收頻率為1600~1700cm-1,是由蛋白多肽骨架的C=O伸縮引起,其吸收最強(qiáng),常被用于蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)分析,海蜇PSC的酰胺Ⅰ帶出現(xiàn)在1656.60cm-1。1480~1600cm-1為酰胺Ⅱ帶的特征吸收頻率,主要為膠原蛋白的C-N伸縮與N-H彎曲的反映,海蜇膠原蛋白的酰胺Ⅱ帶的特征吸收為1550.05cm-1
78、處得強(qiáng)吸收。在膠原的紅外譜圖上1235cm-1~1450cm-1范圍內(nèi)存在吸收,可以作為檢測(cè)膠原的三股螺旋結(jié)構(gòu)是否保持完整的一個(gè)標(biāo)準(zhǔn),紅外光譜圖譜證明海蜇膠原蛋白的三股螺旋結(jié)構(gòu)完整。</p><p><b> 4 小結(jié)</b></p><p> 通過(guò)單因素和響應(yīng)面實(shí)驗(yàn),得到酶法提取膠原蛋白的最佳工藝為:提取時(shí)間41h,底物濃度為19:1,酶濃度為4%,在此條件下
79、測(cè)定的膠原蛋白的提取率為0.411%,與預(yù)測(cè)值的誤差為4.42%。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)海蜇中含有豐富的膠原蛋白,是一個(gè)潛在的膠原蛋白源。通過(guò)氨基酸分析可知海蜇膠原蛋白中甘氨酸含量最高,占氨基酸總量的22%。紫外分析可知PSC的最大吸收峰在208nm,而在208nm處沒(méi)有吸收峰出現(xiàn),說(shuō)明用胃蛋白酶制得的膠原蛋白純度較高。紅外分析證明了海蜇膠原蛋白的三股螺旋結(jié)構(gòu)完整。</p><p><b> 參考文獻(xiàn)</b&
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